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簡介由 bruce ames 博士和其他人在1970年代早期命名和開發，標準的“ ames 檢測"是常用的安全評估和監管提交的檢測方法之一。這種細菌反向突變試驗的目的是通過測量一種化學品在幾個細菌菌株的選定位點誘發反向突變的能力來評估其遺傳毒性。它對多種誘變和致癌化學物質(1,2,3)敏感。這項簡單、快速及廉價的測試，是多種產品(包括藥物、醫療儀器、食物添加劑、工業化學品及除害劑)安全測試所需的基因毒性測試方法之一。
“ ames 試驗"通過使用五個或更多的測試菌株來測量 dna 單堿基水平的遺傳損傷。化驗中使用的鼠傷寒沙門氏菌和大腸桿菌菌株都有一個*的突變，這個突變阻斷了沙門氏菌或色氨酸生物合成的大腸桿菌中組氨酸的合成(4,5)。由于這些原始突變，細菌需要外源性組氨酸或色氨酸才能生存，如果沒有這些必需營養素(營養缺陷) ，細菌就會餓死。檢測的關鍵是細菌經歷了一次補償性突變，使基本基因重新開啟(逆轉) ，允許細胞在缺少組氨酸或色氨酸(原生營養物質)的情況下生長。每個菌株都是通過一種特定類型的突變產生的——要么是堿基對替換，要么是位移突變。由于反向、補償性突變通常必須通過相同的誘變機制發生，機械毒理學信息也可以從 ames 試驗結果中獲得，該試驗結果基于菌株的反向突變模式。
化學物質可以是直接作用的誘變劑，也可以通過代謝轉化為誘變的形式。因此，包括amesassay在內的體外遺傳毒理學分析都是在存在和不存在外源性代謝激活系統的情況下進行的。代謝激活系統包括大鼠肝臟勻漿(s9)和輔助因子的微粒體部分。在使用aroclor 1254 (aroclor)和苯甲酰黃酮混合物(pb bnf)加工前，誘導大鼠肝臟中的酶水平。標準Ames試驗設計包括初步毒性試驗或混合毒性和突變試驗，然后是確定的突變試驗。在毒性和突變試驗中，試驗菌株與s9混合物(在s9激活條件下)或緩沖液(在非激活條件下)、試驗品或對照品、微量組氨酸或色氨酸和熔融瓊脂相結合。
這種細菌利用微量的組氨酸或色氨酸進行幾次細胞分裂，但一旦用完就會停止生長，留下一個典型的“背景草坪"，隨著毒性的增加密度減小。48小時后，只有那些經歷了逆向突變，重新啟動必需基因的細胞，存活了下來，形成了突變菌落。計算背景草坪密度，然后計算復活菌落的數量。經濟合作與發展組織(經合組織)是一個政府間組織，致力于協助各國政府，為經濟、社會和治理方面的挑戰提供指導。經濟合作與發展組織建立了化學試驗的指導方針，來評估化學試劑的安全性，包括藥品。1997年，根據經合組織化學品檢測指南，采用了 test 471: bacterial reverse mutation test。這個測試被推薦為基因毒性活性的初步篩選，特別是點突變誘導活性的篩選。點突變是許多人類遺傳性疾病的原因，有大量證據表明點突變與人類和動物的腫瘤形成有關。(6)
需要 glp 基因毒性測試才能提交監管申請的藥物和化學品的開發數量每年都在增加。同時，在產品開發的早期使用非 glp 遺傳毒性測試來篩選候選人/補償以便進一步開發的做法也在增加。成功的基因毒理學篩選測試需要能夠預測全部 glp 研究的結果，這些研究最終將為規范提交而運行，保存測試物品，價格低廉，并且能夠快速運行。為了滿足這一不斷擴大的市場需求，開發了 ames iiTM 檢測方法。生物依賴性是提供這一重要檢測方法的*位置。生物依賴專用性保持并已成為來自 bruce ames 的原始 ames 細菌株和在 bruceames 博士實驗室開發的 ames ii 菌株(最初由 xenometrix 商業化)的正式分配點。Ames ii 技術由 bioreliance 在全球范圍內授權，并在北美銷售，包括特定服務和成套設備。
該方法的原理是作為遺傳毒性篩選方法的第二代細菌反向突變法。這種檢測方法是對傳統的“ amesassay"方法的改進，由 bruce ames 博士在加州大學伯克利分校的實驗室開發。傳統的 ames 試驗已經被修改，以允許該試驗作為一種高通量篩選試驗，需要非常少量的試驗品。該方法是通過細胞生長來檢測多個微孔中是否存在突變體。 ames ii 方法可以同時檢測移碼突變和外源(s9)代謝激活條件下的堿基對替換。用傳統的 ta98沙門氏菌株檢測到移碼突變。利用6株鼠傷寒沙門氏菌特異性工程菌檢測不同類型的堿基配對。每個菌株在組氨酸操縱子上都有一個不同的錯義突變，這個操縱子被設計成能夠*地還原為6種可能的堿基替換組合中的一種，這些堿基替換組合會引起堿基序列的轉換或顛換。這六種菌株組合成一種單細胞培養物，叫做 tamix。與標準的沙門氏菌測試菌株相比，tamix 菌株具有較低的自發回復頻率，這使得利用微量平板波動格式變得更加容易。兩個菌株被鍍成一式三份的384孔板。如果指示劑介質經歷了從紫色到黃色的變化，或者在井中清楚地看到一個菌落，那么這些水井就被確定為回復劑
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